医学实验室（包括各类医疗机构检验科、临床实验室、第三方医学检验实验室等）在开展淋巴细胞亚群FCM检测的质量管理临床实践时，均可采用或参照使用本专家共识。

1.质量管理：质量管理是实验室为了确保检测结果的准确性、可重复性和可靠性而建立的质量管理体系，及开展的质量策划、质量控制、质量保证和质量改进等一系列活动。

2.质量手册：质量手册是实验室质量管理体系中的最高层次文件，它用于体现实验室的质量方针和质量目标，明确组织结构的职责，并对组织结构和质量管理体系进行总体描述并提出要求。

3.程序文件：程序文件是质量手册的支持性文件，和质量手册一起构成对整个质量体系的描述。它用于规定质量手册中相关要素实施的操作过程，是下一级质量文件的提纲。

4.标准操作程序：标准操作程序（standard operating procedure，SOP）是为了实现特定目标、任务或工作流程，确保工作质量、效率和安全性的一套标准化、规范化的操作方法、流程和步骤。它一般包括操作人员的职责、要求、工作流程以及处理可能出现的问题的指导。

5.校准：校准是指在规定条件下，通过将测量仪器或检测系统的示值与已知标准或参考值进行比较，并根据差异对测量仪器或检测系统进行调整或补偿，以确保测量结果的准确性和一致性的过程。

6.性能验证：性能验证是指通过实验和评估，确认给定项目在预定条件下能够稳定地达到规定要求的过程。给定项目可以是一个过程、测量程序、物质、化合物或测量系统，规定要求可以是满足制造商声明或技术指标。

7.室内质量控制：室内质量控制是检验人员按照一定的频率连续测定稳定样本中的特定组分，并采用一系列方法进行分析，按照统计学规律推断和评价本批次测量结果的可靠程度，以此判断检验报告是否可发出，及时发现并排除质控环节中不满意因素的过程［15］。

8.室间质量评价：室间质量评价是通过组织实验室间比对测试，并按照预先制定的准则评价参与者能力的过程［16］。

9.实验室间比对：实验室间比对是按照预先规定的条件，由两个或多个独立的实验室对相同或类似的材料进行测量或检测的组织、实施和评价的过程［16］。

开展淋巴细胞亚群FCM检测的实验室应建立与实际情况相适应的质量管理体系，确保该体系有效运行并得到持续改进。且该体系应满足上级管理机构的质量管理要求（如医学检验科质量管理体系等）。

实验室应构建以质量手册和（或）程序文件为纲领、SOP为指导、记录文件为依据的质量管理体系文件［13］。其中除淋巴细胞亚群FCM检测特有的文件外，其他管理体系文件可与上级管理机构的质量管理体系文件通用。质量管理体系文件的建立可参考以下所列层级和内容。由于质量手册和程序文件为纲领性文件，所述内容存在部分重叠，在实际工作中也可将二者合二为一。

1.质量手册：质量手册是质量管理体系的总纲要，主要包括但不局限于以下内容：（1）前言：实验室基本情况介绍、授权文件、批准文件。（2）适用范围和承诺书（公正性、保密性、服务性承诺）。（3）术语和定义。（4）总体要求：公正性、保密性、患者相关要求。（5）组织结构和管理要求：法律实体、实验室负责人的要求和职责、开展实验室活动的要求、实验室的组织结构和权限、质量目标和方针、实验室风险管理。（6）实验室资源配置要求：人员、设施、环境、设备、试剂与耗材、校准和计量溯源性、外部服务与供应等要求。（7）检验过程要求：检验前、检验中、检验后，不符合项、数据控制与信息、投诉、应急预案等的管理，持续改进的要求。（8）管理体系的要求：管理体系文件与文件控制、记录控制、风险与改进时机的识别、持续改进、不符合项及纠正措施、内部评估、管理评审。

2.程序文件：程序文件是针对质量手册的具象化要求，包括但不局限于以下内容：（1）结构和管理类程序：涉及实验室沟通、质量指标、风险控制和持续改进的管理程序。（2）资源类管理程序：人员、设施、环境条件、实验室安全、设备、设备校准和计量溯源性、试剂和耗材、服务协议、外部服务等管理程序。（3）过程类管理程序：涉及检验前（样本的采集、保存与运输、接收等）、检验中（包括项目管理、性能验证与确认、参考区间验证、室内质量控制、室间质评、结果可比性管理等）、检验后（结果报告管理、检验后样本管理等）过程管理程序，不符合项的识别和控制程序，数据控制和信息管理程序（信息系统及软件的选择与授权使用、数据传输的验证、结果的自动审核等），投诉的管理程序，应急预案的建立与管理程序（消防应急预案、生物安全应急预案、信息安全应急预案等）。（4）管理体系类程序：文件控制和管理程序、记录控制与管理程序、持续改进程序、纠正措施管理程序、内部审核程序和管理评审程序。

3.SOP：SOP是实验室操作步骤的具体体现，包括但不局限于以下内容：（1）检测项目类SOP：淋巴细胞亚群检测SOP等。（2）仪器设备类SOP：流式细胞仪SOP、离心机SOP、移液器SOP、结果分析软件SOP等。

4.记录文件：记录文件是按照时间点具体落实上述管理文件和操作步骤的记录，大致分为记录表格和评估报告2类，包括但不局限于以下内容：（1）记录表格：人员基本情况登记表，业务培训、考核记录表，人员能力评估表，人员授权表，实验室环境温、湿度监测表，实验室清洁、消毒记录表，医疗废弃物交接登记表，实验室外来人员访问登记表，消防安全检查记录表，设备运行状态记录表，设备故障及处理措施记录表，试剂批号变更验证记录表，试剂质量验证表，外部服务评价表，生物参考区间评审记录表，室内质控失控记录表，室内质控月总结表，室间质评总结表，室间比对结果及分析记录表，不符合记录及纠正措施记录表，数据传输验证记录表，投诉处理记录表，文件更改申请表，文件废止及销毁记录表，质量体系内审计划表，管理评审计划表。（2）评估报告：生物安全风险评估报告、设备校准报告、新项目开展论证评估报告、性能验证报告、质量体系内部审核实施方案、质量体系内部审核报告、质量体系管理评审报告。

共识1：实验室管理体系文件是实验室建立、实施和维持质量管理体系运行的支撑和证明。实验室质量管理体系文件由质量手册和（或）程序文件、SOP文件、记录文件组成。应根据本实验室的实际情况建立淋巴细胞亚群FCM检测质量管理体系文件。推荐强度：强推荐。

目前，国内外相关指南与共识提出的实验室管理体系的建立、管理内容和管理目标等方面的内容，可以用于指导淋巴细胞亚群FCM检测质量管理的实施，但由于实际临床工作繁杂，影响因素多，具体到每个实验室在临床实践过程中遇到的问题又不完全相同，阻碍其管理体系的建立与实施。为了在淋巴细胞亚群FCM检测的临床实践中更好地实现有效的质量管理，本共识按照质量活动开展的时间点，梳理了周期性管理活动以及管理目标，见表1［5，13，17,18,19］。

不同的共识及文献所推荐的设门策略也略有不同，WS/T 360—2024《流式细胞术检测外周血淋巴细胞亚群指南》推荐使用4色或6色抗体组合方案进行淋巴细胞亚群的检测［5］，而在单核细胞较多的情况下推荐增加CD14作为设门抗体［20］。根据使用的情景不同，基本上分为3大类。

以《流式细胞术检测外周血淋巴细胞亚群指南》［5］为代表，使用厂家说明书推荐的设门方案，不论是双管4色还是单管6色方案，均采用的是通过侧向散射光（side scatter，SSC）和CD45设门，使用SSC lowCD45+设淋巴细胞门（使用微球法的单平台方案还同时设置微球门）。在淋巴细胞门内，再根据CD3的表达情况，分为CD3+T细胞和CD3-细胞群，CD3+T细胞进一步分为CD4+T和CD8+T细胞，CD3-细胞群进一步分为CD19+B细胞和CD（16+56）+NK细胞。该方法是临床大多数流式细胞仪自动化软件常用方法，但是该方法应用时可能会存在以下问题：（1）只获得淋巴细胞比例和绝对数，并未设置单个核细胞门以及白细胞门；（2）并未考虑γδT细胞对CD4和CD8双阴性细胞群的影响，对于需要在此基础上做精细化亚群的方案需要作改变，并且γδT细胞占比高的标本可能需要复检或者手工分析。有些研究在此基础上，增加了CD14设门和细胞活性染料设门，分别适用于单核细胞较多影响淋巴细胞设门准确性，以及低温保存后的样本排除死细胞干扰的情况［20,21］。

以《基于多参数流式细胞术精细化分析外周血免疫细胞亚群的中国专家共识》［12］和欧洲6个研究中心建立外周血白细胞亚群参考区间的研究［22］为代表，CD45/SSC设门同时设置淋巴细胞门、单个核细胞门、白细胞门，淋巴细胞门内同步设置CD3+/CD19-T细胞门、CD3-/CD19+B细胞门、CD3-CD19-非T和非B细胞门，T细胞门内设置CD4和CD8阳性T细胞亚群，在非T非B细胞门内再设置CD（16+56）+的NK细胞门。该方法的特点：（1）适用于多管多色FCM精细化分析免疫细胞亚群，淋巴细胞亚群检测只是精细化免疫细胞亚群分析的一个基础组成部分，在此基础上，同时分析树突状细胞、单核细胞、NK细胞管时，需要借用淋巴细胞亚群管的单个核细胞比例和绝对数。（2）针对γδT细胞比例升高可能导致的CD4+和CD8+细胞总和比例低于CD3+细胞，参考γδT细胞CD3表达强，CD4阴性的特点，CD3 hi/CD4-设置初筛γδT细胞门［12］。（3）自带淋巴细胞门质量控制功能，在非T非B细胞门内设置NK细胞门，如果CD（16+56）+占非T非B细胞门低于95%，提示淋巴细胞门设置不准确，或者存在CD3-CD19-CD（16+56）-细胞。

以流式细胞仪和细胞分选在免疫学研究中的应用指南（第三版）［23］为代表，采用了非临床常规方法，并非使用CD45/SSC设置淋巴细胞门，而是通过前向散射光（forward scatter，FSC）和SSC设置淋巴细胞门，单个淋巴细胞门内，设置CD19+的B细胞和CD14+的单核细胞（通过评价淋巴细胞门设置时单核细胞干扰程度，评估设门准确性）；CD14-CD19-细胞门内，通过CD56和T细胞受体αβ（T cell receptorαβ，TCRαβ）设置CD56+TCRαβ-的NK细胞门，CD56+TCRαβ+自然杀伤性T细胞（natural killer T cell，NKT），以及CD56阴性（T细胞）门，CD56阴性（T细胞）门内再设置TCRαβ+T和TCRγδ+T门，TCRαβ+T细胞门内分析CD4和CD8阳性细胞群。

该方法的优点在于：（1）使用FSC/SSC设置淋巴细胞门，省去CD45，使用CD14判断单核细胞污染情况。（2）仅分析TCRαβ+T细胞的CD4和CD8亚群，排除TCRγδ+T细胞干扰。问题在于：（1）对NK和NKT的定义非常规，从CD56-细胞群划分TCRγδ+T细胞并不可取，因为部分TCRγδ+T为CD56+，即将部分CD56+TCRγδ+T划入NK，扩大了NK的比例。（2）NKT也不应该由TCRαβ+和CD56+定义，因为NKT包括CD56+TCRγδ+T细胞。

共识9：目前临床常用的淋巴细胞亚群检测，设门方案有2种主要方法。单纯检测淋巴细胞亚群比例和绝对数的项目建议按照WS/T 360—2024《流式细胞术检测外周血淋巴细胞亚群指南》推荐使用4色或6色抗体组合方案进行淋巴细胞亚群FCM检测。当出现单核细胞增加、死细胞增加及需要准确分析γδT细胞等情况下，在此基础上做改良方案。如果淋巴细胞亚群是精细化分析免疫细胞亚群的一个组成部分，采用增加单个核细胞门以及淋巴细胞设门验证的方法。推荐强度：强推荐。